鸡腿菇子实体多糖的分离纯化、理化性质及抗氧化活性

鸡腿菇，学名毛头鬼伞Coprinus comatus，是一种名贵的食用和药用真菌，味甘滑性平，有益脾、清心安神，经常食用有助消化、增加食欲和治疗痔疮[1]。现代研究结果还证实其具有降血糖[2-3]、提高免疫活性[4-5]和抗肿瘤[6]等生物学功能。鸡腿菇子实体含有丰富的糖类，总糖含量为57.65%，其中还原糖的含量为53.54%，多糖含量为4.11%，是鸡腿菇发挥生理功能的重要组成成分[7]。

目前关于鸡腿菇多糖活性的研究，大都是采用其多糖粗提物[8-9]，并未对纯化、分级后的多糖各组分进行系统研究，而关于其单糖组分、物理化学性质及结构解析更加鲜有报道。本文主要对鸡腿菇子实体多糖组分进行了分离纯化，初步研究各多糖组分的理化性质及抗氧化生物活性，以期为鸡腿菇子实体多糖的开发提供理论依据。

鸡腿菇子实体干粉由山西农业大学食用菌中心提供。DEAE-纤维素52购于Whatman公司。Sephadex G-200购于Pharmacia公司。DPPH购自北京索莱宝科技有限公司。

F22E型可见分光光度计(上海精密科学仪器有限公司)；HL-1型恒流泵(上海青浦沪西仪器厂)；真空冷冻干燥机(德国KENDRO公司)；TDL-4低速离心机(上海安亭科学仪器厂)；HHS-21-4数显恒温水浴锅(上海博讯实业有限公司医疗设备厂)；R201D-11旋转蒸发仪(郑州长城工贸有限公司)；GC-2010型气相色谱仪(日本岛津仪器公司)。

准确称取一定质量的鸡腿菇子实体的干粉，放入圆底烧瓶中，按照料液比为1:25加入蒸馏水，混合均匀，在90 ℃水浴条件下浸提4 h，重复提取2次后，4 000 r/min离心15 min，取上清液，加入3倍体积的95%乙醇，4 ℃下醇沉过夜，之后4 000 r/min离心15 min，取沉淀真空冷冻干燥，研钵研碎即鸡腿菇粗多糖样品。采用苯酚-硫酸法和考马斯亮蓝染色法进行多糖和蛋白质含量的测定。

Sevage法脱蛋白：将1.3.1中得到的粗多糖样品配制成1%的粗多糖溶液，将粗多糖溶液与Sevage试剂(氯仿：正丁醇=4:1) 按4:1的比例混匀，振荡20 min后静置30 min，3 500 r/min离心20 min去沉淀，测定上清液中多糖含量和蛋白质含量。

三氯乙酸(TCA)法脱蛋白：将1.3.1中得到的粗多糖样品配制成1%的粗多糖溶液，向粗多糖溶液中加入终浓度为12%的TCA，振荡20 min后静置30 min，3 500 r/min离心15 min去沉淀，测定上清中多糖和蛋白质的含量。

鸡腿菇子实体多糖的柱层析：DEAE-纤维素52离子交换柱层析：鸡腿菇粗多糖经Sevage法去除蛋白质后，流水透析48 h (除去无机离子、低聚糖等杂质)，采用旋转蒸发仪浓缩，使其浓度达到10 mg/mL。将1 mL浓缩好的鸡腿菇糖液加到处理好的DEAE-纤维素52离子交换柱(30 cm×2.0 cm)中，依次用浓度为0.15、0.25、0.35、0.45 mol/L NaCl的0.02 mol/L磷酸盐缓冲液(pH 7.4) 进行分段梯度洗脱，洗脱速率为36 mL/h，每管3 mL分布收集，每个梯度收集10管，即每个梯度的洗脱体积为30 mL。采用苯酚-硫酸法逐管检测多糖含量。

Sephadex G-200凝胶柱层析：经DEAE-纤维素52离子交换层析后得到的多糖峰值管中的收集液合并，浓缩5倍后经Sephadex G-200层析柱(50 cm×1.0 cm)层析，上样量为1 mL，用0.005 mol/L的磷酸盐缓冲液(pH 6.2) 进行洗脱，采用苯酚-硫酸法逐管检测多糖含量。

测试纯化后的鸡腿菇多糖Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B在水、乙醇、乙醚、丙酮、氯仿、正丁醇等有机溶剂中的溶解度，进行斐林试剂反应，三氯化铁反应，CTAB反应和硫酸-咔唑反应，碘-碘化钾反应[10]。

取待分析的Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B多糖样品10 mg于10 mL离心管中，加入2 mL CF3COOH (TFA)，充氮气封管于120 ℃下油浴3 h。减压蒸干水解液，加甲醇反复处理5次，以除尽CF3COOH，真空干燥水解物，然后进行衍生化。

衍生物的制备(糖腈乙酰酯化衍生法)：称取10 mg固体水解糖样、10 mg盐酸羟胺和1 mL无水吡啶，待溶解后于90 ℃下水浴反应30 min并间歇振荡。取出后冷却至室温，加入1 mL无水醋酸酐，于90 ℃下继续水浴反应30 min进行乙酰化。取出后在冰浴中迅速冷却，加入1 mL蒸馏水搅拌，用氯仿萃取3次，合并氯仿层，减压蒸干。

样品用1 mL氯仿溶解后，用0.22 μm有机微孔滤膜过滤备用。

气相色谱检测条件如下：

色谱柱：毛细管柱DB-17，30 m，I.D. 0.25 μm；载气：N2，流速：30 mL/min；燃气：H2，流速：40 mL/min；助燃气：空气，流速：400 mL/min；分流比：100:1；检测器：FID1；汽化室温度：320 ℃；检测器温度：320 ℃；色谱柱温度：190 ℃。

总还原能力的测定：参考Oyaizu等[11]的方法并略做改动。基本操作步骤为：1 mL样品溶液，加入2.5 mL的0.2 mol/L磷酸缓冲液(pH 6.6) 和2.5 mL 1% K3[Fe(CN)6]于试管中混匀，50 ℃水浴中反应20 min，迅速冷却并加入2.5 mL 10% TCA，混匀后3 500 r/min离心10 min，取3 mL上清液加入0.6 mL 0.1% FeCl3混匀，再加3 mL蒸馏水摇匀，波长700 nm测定。以蒸馏水为空白对照，Vc为阳性对照。

DPPH自由基清除能力测定：取3 mL样品溶液，加入1 mL无水乙醇配制的DPPH溶液，振荡后室温条件下放置于暗处30 min，用无水乙醇调零，于517 nm波长处测定其吸光度(A1)；空白组用3 mL无水乙醇代替样品溶液，其余处理同上，在517 nm下测定吸光度(A0)；对照组用1 mL无水乙醇代替DPPH溶液，其余处理同上，在517 nm下测定吸光度(A2)；以Vc作阳性对照。

羟自由基(·OH)自由基清除能力测定[12]：取1 mL样品溶液，加入1 mL硫酸亚铁溶液(9 mmol/L)，1 mL水杨酸乙醇溶液(9 mmol/L)和1 mL过氧化氢溶液(0.03%，V/V)，37 ℃反应30 min，3 500 r/min离心15 min后得上清，于510 nm处测定吸光度(A1)；空白组以1 mL蒸馏水代替样品溶液，其余处理同上，于510 nm下测定吸光度(A0)；对照组以1 mL蒸馏水代替过氧化氢溶液，其余处理同上，在510 nm下测定吸光度(A2)；以Vc作阳性对照。

多糖中蛋白质的存在形式主要有两种，一是游离蛋白，另一种是与糖链结合成糖蛋白或糖肽。多糖脱蛋白主要以脱除游离蛋白为主。Sevage法脱蛋白具有条件温和、能够有效避免多糖降解等优点，是比较经典的脱蛋白方法。由图 1可知，鸡腿菇多糖中蛋白质的脱除率随着脱蛋白次数的增加而增加，当用此法重复脱蛋白3次以后，蛋白脱除率的增加幅度渐趋于平缓；而多糖保留率随着脱蛋白次数的增加而降低，用Sevage法脱蛋白3次，此时蛋白质脱除率为61.30%，多糖保留率为53.12%。

TCA法脱蛋白的结果如图 2所示。由图 2可知，鸡腿菇多糖中蛋白质的脱除率随脱蛋白次数的增加而提高，当用此法重复脱蛋白2次以后，蛋白脱除率的增加幅度渐趋于平缓，而多糖保留率随脱蛋白次数的增加而降低，因此选择用TCA法脱蛋白2次，此时蛋白质脱除率为72.27%，多糖保留率为59.23%。

表 1试验结果显示采用Sevage法脱蛋白3次后得到的鸡腿菇多糖的抗氧化活性明显强于采用TCA法脱蛋白2次后的多糖。TCA法是根据蛋白质在有机溶剂中容易变性沉淀的特点将其除去，具有蛋白脱除率高、操作简单等优点。然而用此法脱除蛋白质时，低浓度的TCA可使变性蛋白在沉淀过程中吸附部分多糖，从而导致多糖的损失；高浓度的TCA会同时沉淀变性的游离蛋白和部分糖肽，并且会引起糖链的断裂导致部分多糖降解，进而对多糖的活性造成不利影响[6]。因此从保护多糖活性等角度出发，本文采用Sevage法脱蛋白。

将经过脱蛋白和透析处理的鸡腿菇多糖样品，按照1.3.2中的方法进行DEAE-纤维素52离子交换层析，梯度洗脱，每个梯度收集10管，每管3 mL，用苯酚-硫酸法跟踪监测多糖含量，得到洗脱曲线，见图 3。其中1–10管为0.15 mol/L NaCl洗脱收集的组分，10–20管为0.25 mol/L NaCl洗脱收集的组分，20–30管为0.35 mol/L NaCl洗脱收集的组分，30–40管为0.45 mol/L NaCl洗脱收集的组分。共收集到3个主要洗脱峰依次命名为Ccp-Ⅰ、Ccp-Ⅱ和Ccp-Ⅲ。

将经DEAE-纤维素52离子交换层析柱纯化后所得主要多糖洗脱峰Ccp-Ⅰ (9–14管)合并收集，浓缩5倍过Sephadex G-200层析柱，用0.005 mol/L的磷酸盐缓冲液(pH 6.2) 进行洗脱，苯酚-硫酸法跟踪监测多糖含量，洗脱曲线如图 4。收集到2个主要洗脱峰Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B。

鸡腿菇纯化多糖Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B的一般理化性质测定结果如表 2所示。Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B均为白色絮状固体，能溶于水，不溶于无水乙醇、乙醚、丙酮、氯仿及正丁醇等有机溶剂；两种多糖与斐林试剂和三氯化铁反应均为阴性，说明不含游离单糖和多酚类物质；与CTAB和硫酸-咔唑反应阴性，说明不含有糖醛酸；与碘-碘化钾反应阴性，说明不是淀粉类多糖。

鸡腿菇纯化多糖Ccp-Ⅰ-A样品经酸水解并进行糖腈乙酸酯衍生化，在1.3.4的检测条件下所得结果如图 5和图 6所示。各单糖峰面积/对应分子量所得的比值即为各单糖的摩尔比，由分析可知，Ccp-Ⅰ-A由甘露糖、葡萄糖和半乳糖组成，摩尔比为2.03:9.52:1。相似地，吴艳兵等[13]采用高效阴离子色谱法(HPAEC)，对经乙醇分级沉淀及DEAE Sephadex A-25离子交换纯化后的鸡腿菇子实体多糖组分CCP60中的单糖组成进行分析，结果表明其主要由葡萄糖和半乳糖组成。

Ccp-Ⅰ-B由岩藻糖和半乳糖组成，其摩尔比为1:5.21。姚毓婧等[14]也对鸡腿菇子实体多糖组分CC30w-l完全酸水解后进行HPAEC-PAD分析，结果表明其主要由岩藻糖和半乳糖组成，其摩尔比为1:4.02。Fan等[15]也曾在鸡腿菇菌丝体中获得岩藻半乳聚糖。另外，其他真菌也曾被报道存在岩藻半乳聚糖，如树舌Ganoderma applanatum中的岩藻半乳聚糖[16]、拟层孔菌属Fomitopsis fraxionea[17]、绒状火菇Flammulina velutipes[18]、猪苓Polyporus pinicola[19]、火绒蕈Polyporus fomentarius和桑黄Polyporus igniarius[20]中的甘露岩藻半乳聚糖，以及硫磺多孔菌Laetiporus sulphureus[21]中的岩藻甘露半乳聚糖。

DPPH是一种稳定的自由基，且在乙醇溶液中517 nm处存在最大吸收峰。当DPPH遇到抗氧化剂等能提供质子的物质时，自由基被清除同时吸光度值降低。图 7为不同浓度下为Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B对DPPH的清除作用，可见，随着鸡腿菇多糖组分的浓度越高，对DPPH的清除作用越强，当浓度为300 μg/mL时，Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B对DPPH的清除率分别为72.1%和38.6%，高于分级纯化前Ccp-S3 (27.1%)的清除率，其中，Ccp-Ⅰ-A对DPPH的清除率与VC相当(70%) (表 1)。本文中报道的Ccp-Ⅰ-A对DPPH的清除率高于文献[22]报道中平菇多糖分级组分PSPO-1a (41%，1 mg/mL)的清除率，但低于灵芝菌糠[23]及茶树菇多糖[24]分级组分GRPS-2 (74.21%，100 μg/mL)和EPS-2 (88%，100 μg/mL)对DPPH的清除率。

Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B对·OH的清除作用见图 8，由图 8可知鸡腿菇多糖组分对羟基自由基的清除效果也与浓度呈正相关。在浓度为300 μg/mL时，Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B对·OH自由基的清除率分别为55.3%和15.5%，高于分级纯化前Ccp-S3 (10.1%)的清除率，而且，Ccp-Ⅰ-A对·OH自由基的清除率高于VC(30%) (表 1)。本文中报道的Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B对DPPH的清除率高于文献[22]中报道的平菇多糖的分级组分PSPO-1a (10.5%，2.5 mg/mL)[22]的清除率；但低于灵芝菌糠[23]及茶树菇多糖[24]分级组分GRPS-2 (69.94%，100 μg/mL)和EPS-2 (90%，100 μg/mL)对羟基自由基的清除率。

如图 9所示，在300 μg/mL时，Ccp-Ⅰ-A和Ccp-Ⅰ-B在700 nm处测得的还原力分别为0.55和0.22，远远低于同浓度下Vc的还原力(1.2) (表 1)，并且也低于文献报道中灵芝菌糠和茶树菇多糖分级组分GRPS-2 (0.42，100 μg/mL)和EPS-2 (0.91，100 μg/mL)的还原力[23-24]。

经分级纯化后多糖组分的抗氧化活性可能降低，也可能升高。对于前者，一方面可能是因为粗多糖在分级纯化过程中除去了许多具有抗氧化能力的糖蛋白、糖肽等活性成分而导致整体抗氧化能力下降[25]；另一方面也可能是由于粗多糖中各级组分的协同作用使其具有较强的抗氧化能力，经柱层析分离后此协同作用减弱所致。对于后者，层析分级步骤使得某些具有强氧化活性的多糖单元等组分得到了富集与纯化，使得单位浓度的活性增强。另外，经柱层析分级纯化后的各种多糖组分的抗氧化活性大小也不相同，这可能与其各自的空间结构、所含糖单元类型及糖苷键构型、取代基不同有关[26]。

今后需对鸡腿菇两个分离纯化后的多糖组分进行进一步的结构解析及抗氧化活性的动物实验，深入研究其构效关系，为其作为天然抗氧化剂奠定一定理论基础，也为鸡腿菇水溶性多糖药物的开发及相关功能性食品的研制开辟一条新的路径。